內徑(mm)

1.0

2.0

3.0

4.6

6.0

10

20

28

柱長(mm)

ALL

ALL

ALL

ALL

ALL

20-150

250

20-100

150-250

ALL

出廠溶劑

乙腈 / 水 = 50 / 50

乙腈 / 水 = 60 / 40

甲醇 / 水 = 70 / 30

甲醇 / 水 = 70 / 30

甲醇 / 水 = 80 / 20

甲醇 / 水 = 70 / 30

甲醇 / 水 = 80 / 20

甲醇 / 水 = 80 / 20

沖洗方法

1. 去除色譜柱內的緩沖液，鹽，酸的方法：
          使用不含緩沖液，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘。
          例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗

2. 沖洗色譜柱內附著物的方法，基線不穩時的解決方法：

• 樣本不是蛋白質時，使用甲醇或四氫呋喃沖洗。

• 樣品是蛋白質時，使用含0.1%三*乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗

保存方法

1. 短期（數日）保存：
          使用不含緩沖液，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘。保存。
          例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗

2. 長期（1個月以上）保存：
          先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱，再將流動相置換為乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30，保存。

pH范圍

pH2～pH10

zui大耐壓

20MPa

15MPa

溫度范圍

高可耐60度，建議在20~50度下進行分析。

可使用的溶劑

除堿溶液和強酸溶液（pH1.5以下）以外都可以使用。（強堿溶液會使硅膠溶化，強酸溶液會使固定相脫落）
  注意點：
  溶劑粘度過高會導致壓力上升，請將壓力控制在20Mpa以下。 使用酸性流動相或凝固點高的溶劑后，清洗色譜柱。

注意事項

• 一般情況下緩沖液濃度為0.005~0.02 mol/L即可。

• 流動相在使用前要通過0.5µm以下的濾膜過濾。

• 水90%以上的留動相可能會導致再現性降低。

• 蛋白質反相模式分析時，請使用大孔徑色譜柱（孔隙直徑300?) COSMOSIL Protein - R（粒徑5µm）。

色譜柱

2.5μm C₁₈-MS-II

內徑(mm)

2.0

3.0

柱長(mm)

ALL

ALL

出廠溶劑

乙腈 / 水 = 50 / 50

沖洗方法

1. 去除色譜柱內的緩沖液，鹽，酸的方法：使用不含緩沖液，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘。
          例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗

2. 沖洗色譜柱內附著物的方法，基線不穩時的解決方法

• 樣本不是蛋白質時，使用甲醇或四氫呋喃沖洗。

• 樣品是蛋白質時，使用含0.1%三*乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗

保存方法

1. 短期（數日）保存：
          使用不含緩沖液，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘。保存。
          例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗

2. 長期（1個月以上）保存：
          使用后，先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱，再將流動相置換為乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30，保存。

4.6 mm I.D. x 150 mm

38019-81

4.6 mm I.D. x 250 mm

38020-41